Code No. |
包装単位 |
希望納入価格 |
| 310-06591 | 50回用 |
43,000円 |
>特長 >キット内容 >使用方法 >実験例 >マニュアル >MSDS >関連製品 >English
■GM quicker 2 は、厚生労働省 「平成18年9月15日付け食安輸発第0915002号」において、遺伝子組換え米(LLRICE601)の検査法(DNA抽出精製)に収載されました。
■GM quicker 2 は、厚生労働省 「平成19年1月26日付け食安監発第0126005-8号」における「安全性未審査の中国米加工品の検知法」に収載されました。
■GM quicker 2 は、厚生労働省 「平成21年6月26日付け食安監発0626008号」において、安全性未審査の遺伝子組換えナタネ(RT73 B.rapa)の暫定検査法(スクリーニング検査のDNA抽出精製 法)に収載されました。
GM quicker 2は、コメを始めとする穀物からDNAを抽出するためのキットです。本キットは、カオトロピックイオン存在下でDNAがシリカへ吸着する原理(Boom Technology)を採用しており、抽出操作にフェノールやクロロホルムなどの毒性有機溶媒を使用しません。遺伝子組換え作物(Genetically Modified Organisms:GMO)の検査においては、DNAを用いた方法が広く普及していますが、これまでの植物DNA抽出キットは抽出対象を「葉」としていたため、穀物からのDNA抽出には必ずしも効率的ではありませんでした。
本キットでは、抽出対象を穀粒へ特化させることによって、約 40分間という短い時間で高い精製度のDNAを抽出することができます。また、本キットはα-アミラーゼを使用する事により、うるち米のみならずもち米にも対応した設計となっており、コメ未知試料の検査において対応が可能です。さらに、コメ及びナタネに関しては、1粒検査のためのDNA抽出にも対応可能です。使用するスピンカラムは、カラム容積を最大限確保しており、内封されたシリカゲル膜は、充分なDNA吸着容量と高い溶出効率を確保しています。
本キットによって抽出された DNAは、PCRや制限酵素反応に適用することができます。
・コメ、ナタネ、ジャガイモから約40分で高精製度のDNAを抽出することができる
・抽出操作にフェノールやクロロホルムなどの毒性有機溶媒を使用しない
・試料のクロスコンタミネーション防止に配慮したキット設計を行っている
・抽出したDNAはPCRや制限酵素反応にそのまま使用することができる
構成品名 容量 保存GE1 Buffer 40 ml × 1本室温保存(15~25℃) GE2-K Buffer 5 ml × 1本室温保存(15~25℃) GB3 Buffer 12.5 ml × 1本室温保存(15~25℃) GW Buffer 40 ml × 1本室温保存(15~25℃) TE(pH8.0) 10 ml × 1本室温保存(15~25℃) Proteinase K 1 ml × 1本冷凍保存(-20℃) α-Amylase(高濃度品) 0.1 ml × 1本冷凍保存(-20℃) RNase A(100mg/ml) 0.5 ml × 1本室温保存(15~25℃) Spin Column 50 個冷蔵保存(2~10℃) マニュアル 1部 -
使用法1: コメからのDNA抽出プロトコール
- コメをフードミル等で粉砕し、コメ粉末試料を調製する。
- 2.0ml チューブに 0.5gのコメ粉末試料を秤量し、700µl のGE1 Buffer、20µlのProteinase K、2µlのα-Amylase および10µl の RNase A をそれぞれ添加し、ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する。
- 15分間、60℃で加温する。
- 85µl の GE2-K Buffer を添加し、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
- 遠心(≧13K×g, 5分間, 室温)する。
- 上清 400µlを新しい 1.5ml チューブに移す。
- 150µl の GB3 Buffer を添加後、150µl のイソプロパノールを添加し、10~12 回チューブを激しく転倒させ、よく混和する。
- 7の混合液を Spin Column に全量移し、遠心(13K×g, 30秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- 650µl の GW Buffer を Spin Column に添加した後、遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- Spin Columnを新しい 1.5 ml チューブに移す。
- 50µlの TE(pH8.0)を滴下した後、3 分間室温で静置する
- 遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液を回収する。
使用法2: コメ1粒からの DNA抽出プロトコール
- コメ種子1粒をアルミホイル等で包み、金槌等で粉砕し、コメ粉末試料を調製する。
- 1.5 ml チューブにコメ粉末試料を添加し、250µl のGE1 Buffer、10µlのProteinase K、2µlのα-Amylase および5µl の RNase A をそれぞれ添加し、ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する。
- 15分間、60℃で加温する。
- 40µl の GE2-K Buffer を添加し、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
- 遠心(≧13K×g, 5分間, 室温)する。
- 上清 200µlを新しい 1.5ml チューブに移す。
- 75µl の GB3 Buffer を添加後、75µl のイソプロパノールを添加し、10~12 回チューブを激しく転倒させ、よく混和する。
- 7の混合液を Spin Column に全量移し、遠心(13K×g, 30秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- 650µl の GW Buffer を Spin Column に添加した後、遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- Spin Columnを新しい 1.5 ml チューブに移す。
- 50µlの TE(pH8.0)を滴下した後、3 分間室温で静置する
- 遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液を回収する。
使用法3: ナタネからのDNA抽出プロトコール
- ナタネ種子をフードミル等で粉砕し、ナタネ粉末試料を調製する。
- 2.0ml チューブで 0.2gのナタネ粉末試料を秤量し、800µl のGE1 Buffer、20µlのProteinase K、10µl の RNase A をそれぞれ添加し、ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する。
- 15分間、65℃で加温する。
- 100µl の GE2-K Buffer を添加し、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
- 遠心(≧13K×g, 5分間, 室温)する。
- 上清 350µlを新しい 1.5ml チューブに移す。
- 130µl の GB3 Buffer を添加後、130µl のイソプロパノールを添加し、10~12 回チューブを激しく転倒させ、よく混和する。
- 7の混合液を Spin Column に全量移し、遠心(13K×g, 30秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- 650µl の GW Buffer を Spin Column に添加した後、遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- Spin Columnを新しい 1.5 ml チューブに移す。
- 50µlの TE(pH8.0)を滴下した後、3 分間室温で静置する
- 遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液を回収する。
使用法4: ナタネ1粒からのDNA抽出プロトコール
- 1.5ml チューブにナタネ種子1粒を入れ、ペッスルでよく破砕する。
- 250µl のGE1 Buffer、10µlのProteinase K、5µl の RNase A をそれぞれ添加し、ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する。
- 15分間、65℃で加温する。
- 40µl の GE2-K Buffer を添加し、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
- 遠心(≧13K×g, 5分間, 室温)する。
- 上清 200µl を新しい 1.5ml チューブに移す。
- 75 µl の GB3 Buffer を添加後、75µl のイソプロパノールを添加し、10~12 回チューブを激しく転倒させ、よく混和する。
- 7の混合液を Spin Column に全量移し、遠心(13K×g, 30秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- 650µl の GW Buffer を Spin Column に添加した後、遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- Spin Columnを新しい 1.5 ml チューブに移す。
- 50µlの TE(pH8.0)を滴下した後、3 分間室温で静置する
- 遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液を回収する。
使用法5: 生ジャガイモからのDNA抽出プロトコール
- 生ジャガイモを約3mm角のサイコロ状にナイフで細かく切断する。
- 1.5ml チューブで 0.3gの生ジャガイモ粉末試料を秤量し、500µl のGE1 Buffer、4µl の RNase A をそれぞれ添加してペッスルでよく破砕後、ボルテックスミキサーにて 30 秒間攪拌する。
- 85µl の GE2-K Buffer を添加し、ボルテックスミキサーにてよく混和する。
- 遠心(≧13K×g, 5分間, 室温)する。
- 上清 400µl を新しい 1.5ml チューブに移す。
- 150µl の GB3 Buffer を添加後、150µl のイソプロパノールを添加し、10~12 回チューブを激しく転倒させ、よく混和する。
- 6の混合液を Spin Column に全量移し、遠心(13K×g, 30秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- 650µl の GW Buffer を Spin Column に添加した後、遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液は廃棄する。
- Spin Columnを新しい 1.5 ml チューブに移す。
- 50µlの TE(pH8.0)を滴下した後、3 分間室温で静置する
- 遠心(13K×g, 60秒間, 室温)し、濾液を回収する。
1. コメ種子1粒からのDNA 抽出
本キットを用いてコメ種子1粒からDNA 抽出を行った。いずれの種子からもDNA を抽出することができた。
本キットで抽出したDNA 50µl のうちの20µl 量を 1% Agarose S で電気泳動した。
[電気泳動写真]
1 2 3 4 5Lane 1, 5 :OneSTEP Marker 6(λ/ StyⅠ digest)
Lane 2 :コシヒカリ玄米 genomic DNA
Lane 3 :コシヒカリ精米 genomic DNA
Lane 4 :コシヒカリ米飯 genomic DNA2. コメ種子1粒から抽出したDNAのPCR
本キットを用いて抽出した、コメ(コシヒカリ)種子1粒からの DNAサンプル0.1µl を鋳型とし、コシヒカリ特異的な領域をPCRにて増幅した。 PCR産物の一部 (10µl) を 2% Agarose S ゲルで電気泳動した。
[電気泳動写真]
1 2 34 5 6 Lane 1, 6 :OneSTEP Marker 4(φX174/Hae III digest)
Lane 2 :コシヒカリ玄米 genomic DNA を鋳型に増幅
Lane 3 :コシヒカリ精米 genomic DNA を鋳型に増幅
Lane 4 :コシヒカリ米飯 genomic DNA を鋳型に増幅
Lane 5 :no template control3. コメ種子からのDNA抽出と制限酵素消化
本キットで各種コメ種子から抽出したDNA を制限酵素EcoRⅠで消化した。
[電気泳動写真]
1 2 34 5 6 7 8 Lane 1, 8:OneSTEP Marker6 (λ/ Sty I digest)
Lane 2 :コシヒカリ genomic DNA intact
Lane 3 :コシヒカリ genomic DNA digest / EcoR I
Lane 4 :タイ米 genomic DNA intact
Lane 5 :タイ米 genomic DNA / EcoR I
Lane 6 :もち米 genomic DNA intact
Lane 7 :もち米 genomic DNA / EcoR I
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Code No. 製品名 包装単位 希望納入価格 317-06361GM quicker 50回用 36,000円 317-07341 20回用 35,000円 310-06591GM quicker 2 50回用 43,000円 311-07241GM quicker 3 50回用 54,000円 319-07161GM quicker 96 96 ウェルプレート×4 120,000円 314-06371GE1 Buffer 500ml 12,000円 311-06381GE2 Buffer 200ml 8,000円318-06651 GE2-K Buffer 100 ml 8,000円 315-06661GB3 Buffer 25ml 8,000円 311-06641GW Buffer 80ml 8,000円 318-06391RNase A (100mg/ml) 2.5ml 19,600円316-90025 TE (pH8.0) 500ml 9,000円312-06671 GM quicker 2 Enzyme Set
(Proteinase K:2ml, α-Amylase:0.1ml×2) 1set 20,000円
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